العفن الابيض علي الخس

#العفن_الأبيض_على-الخس

Sclerotinia White mold in Lettuce:

الإسم العلمي: Sclerotinia sclerotiorum

نوع المرض: فطري

مرض فطري خطير واسع الانتشار يصيب عدد كبير من نباتات الخضار في البيوت المحمية والحقل في جميع مناطق العالم المعتدلة الباردة الرطبة وحتى الجافة يمكن ان يصيب كامل أجزاء النبات (الجذور والساق والاوراق والازهار والثمار والجذور) في أي مرحلة من مراحل النمو بما في ذلك الشتول ومرحلة النمو النشط وبمرحلة الانتاج و أثناء التخزين ويعتبر مرض مدمر للخضار المخزنة ويحدث خسائر كبيرة اثناء التخزين الطويل حيث يتبع الاصابة بالعفن الابيض الاصابة بالعفن الطري.

السمة الأساسية له انتاج اجسام سوداء (سكليروتيا) وميسيليوم أبيض وتتوضع الاجسام السوداء ( سكليروتيا) على عمق 2 سم من سطح التربة

ينتشر المرض بسهولة عن طريق المخلفات النباتية المصابة والمعدات الزراعية والامطار والتيارات الهوائية والاعشاب المضيفة وينتقل من النباتات المضيفة المجاورة للمحصول المزروع ولهذا المرض عدد كبير من النباتات المضيفة تتوزع في 64 عائلة نباتية و225 جنس نباتي و408 نوع نباتي.

المسبب المرضي:

الفطر سكليروتينا:

Sclerotinia sclerotiorum

S.minor

سبب المرض:

يسبب الفطرالعفن الابيض على العديد من نباتات الخضار مع بعض الاختلافات بينهما في دورة الحياة حيث يسبب الاخير اصابة مباشرة للنباتات من الانسجة المصابة اما الاول نادرا ما يصيب النبات بشكل مباشر فيشكل اجسام ثمرية على سطح التربة تسمى apothecia تنتج ابواغ تنتقل بالرياح والامطار وتأتي الاصابة من خارج الحقل.

كما ان سكليروتيا الثاني صغيرة تكون بقطر 1/16-1/8 بوصة اما سكليروتيا الاول كبيرة تكون بقطر 1/2 بوصة ولها شكل غير منتظم. Scleroitum cepivorum يصيب الفصيلة الزنبقية البصل والثوم وغيرها يصيب وينمو على جذور نباتات البصل والثوم مما يؤدي لتعفنها وبالتالي يتسبب في اصفرار الاوراق لتعفن الجذور

يمكن للفطر البقاء على قيد الحياة في التربة لسنوات عديدة على شكل سكليروتيا sclerotia طيلة فترة الشتاء ووتبدأ العدوى بإنبات هذه الكتل السوداء ( سكليروتيا) والتي تعطي اجسام ثمرية وتشكيل apothecia التي تعطي مئات الالاف من الابواغ ascospores ومع توفر الرطوبة والحرارة المناسبة تحت الغطاء النباتي تنبت الابواغ على أنسجة ادنبات المصاب وتعطي ميسيليوم mycelium و يمكن أن يحدث الإنبات على الأوراق فقط في وجود مياه حرة مثل المطر والري بالرش والندى وسيتطور مرض الفطر الأبيض القطني ، على الأنسجة المصابة أحيانًا مصحوبة بتكوُّن sclerotia عندما تسمح ظروف الرطوبة بذلك.

النباتات المضيفة للعفن الابيض:

يصيب نباتات العائلة القرعية جميعها والعائلة البقولية والباذنجانية والملفوفية والفريز والريحان ، الطرخون و النعناع والخس عباد الشمس والكانولا والتبغ. وللعفن دورة عدوى واحدة في نفس الموسم.

#الظروف الملائمة لنمو الفطر:

يتطور المرض تحت درجات حرارة معتدلة وظروف رطبة ومع استمرار رطوبة الاوراق لفترات طويلة (24-12 ساعة) هي الأمثل لتطوير المرض يفضل العفن الأبيض درجات الحرارة المنخفضة نسبيًا بين 8 و 20 درجة مئوية ويمكن أن يبقى العفن الأبيض في التربة لمدة 10-8 سنوات ويمكن ان تصل ل 15 عام.

دورة حياة:

بعد فترة من التكييف في بيئة شبه مشبعة وباردة نسبيًا (من 10 إلى 20 درجة مئوية)، يؤدي التصلب المنقول بالتربة لـ S. sclerotiorum الموجود على بعد 2 سم من سطح التربة إلى إنتاج أبوثيشيا وأبواغ أسكوية. في أغلب الأحيان، يحدث هذا بعد هطول أمطار غزيرة أو حدث ري، ويساعده سطح تربة مظلل وبطيء الجفاف. يتم تفريغ الأبواغ الأسكوية بالقوة ( الشكل 14 ) ويتم نقلها بواسطة التيارات الهوائية إلى الأنسجة الحساسة. فترات طويلة من رطوبة الأوراق (16 إلى 48 ساعة) مع درجات حرارة تتراوح بين 12 إلى 24 درجة مئوية تعزز إنبات الأسكوسبوري والعدوى. نظرًا لأن الأبواغ الأسكوية لـ S. sclerotiorum تفتقر إلى الطاقة اللازمة لإصابة أنسجة المضيف السليمة بشكل مباشر، فإن الأنسجة المضيفة “الضعيفة” شديدة الحساسية، مثل بتلات الزهور أو أوراق الشيخوخة، عادة ما تكون أول الأنسجة التي تصاب بالعدوى. تعمل الأنسجة “الضعيفة” المستعمرة كقاعدة غذائية لنمو الميسليوم بطاقة كافية لاختراق أجزاء النبات السليمة. ونتيجة لذلك، غالبًا ما تتزامن أحداث العدوى الكبرى مع فترات الإزهار وما بعد الإزهار، حيث تسقط البتلات المسنة عادةً وتستقر في محاور الفروع أو تلتصق بالأوراق والأعناق والسيقان والفواكه النامية. ومع البلل الكافي، تنتقل الميسيليوم من الأنسجة المستعمرة إلى الأنسجة المضيفة القوية مثل السيقان والأوراق والقرون وما إلى ذلك. وفي وقت لاحق من عملية المرض، يتشكل التصلب، إما على سطح النبات أو داخل السيقان وأجزاء النبات الأخرى. عندما يموت النبات أو جزء النبات، تسقط التصلبات في التربة حيث يمكنها البقاء على قيد الحياة لعدة سنوات. في بعض الحالات، مثل نباتات الكرنب وشتلات التبغ، تكون الأبواغ الأسكوية لـ قادرة على إصابة النباتات من خلال الجروح. في هذه الحالات، يمكن أن تؤدي S.sclerotiorum الإصابة الميكانيكية أو الكيميائية أو تغذية الحشرات أو تجميدها إلى زيادة حدوث وشدة العفن الأبيض

#الأعراض

الأعراض المبكرة للمرض تكون على شكل مناطق مغمورة بالماء عند قاعدة ساق النبات في مستوى سطح التربة تتوسع بشكل غير منتظم وغير محدد وعندما تتوسع الاصابة يتم تحليق الساق فتظهر على شكل ذبول واصفرار الأوراق والموت في البندورة والخيار والبقوليات وغيرهم وفي قاعدة الاوراق في الخس والهندباء والجزر .

يبدأ المرض مبكراً خلال فترة التزهير وخاصة البقوليات حيث تتغذى الفطريات على الازهار.

ومع استمرار وجود الرطوبة يظهر نمو قطني ابيض على قاعدة النبات وفي اجزاء اخرى ينمو الميسيليوم الابيض بسرعة كبيرة ويصيب مساحات كبيرة خلال الحصاد

هذا الفطر يصيب الساق في مستوى التربة ، ويصيب الأوراق والازهار والثمار .

الاعراض الأولى للمرض هي نمو أبيض قطني على الأنسجة المصابة ومع تقدم المرض يتحول لون النبات تدريجيا إلى اللون الأصفر ثم البني وقد يموت وعندما يتم قطع الساق المصاب ، يمكن رؤية الفطر في النخاع تشكيلات بلون أسود كبير (12-6 ملم) .

الثمرة المصابة ينمو عليها الفطر الأبيض وتصبح طرية ومائية.

تنتج هيفات الفطر انزيمات وحمض اوكساليك تتسبب في التحلل المائي في الانسجة المصابة.

صورة :العفن الأبيض على الخس. لاحظ نمو الفطريات البيضاء والتصلب الأسود الذي يتطور على قاعدة الساق. يمكن لـ sclorotia البقاء على قيد الحياة في التربة لمدة تصل إلى 10 سنوات

صورة :توضح أعراض العفن الأبيض على الخس

صورة:تبين الإنتشار الشديد لمرض العفن الأبيض على الخس

صورة تبين مجموعة امراض على الخس بحيث يمثل الرقم 1 أعراض white mold و2تطور المرض بحيث يتغير اللون إلى البني

#الاجراءات الوقائية :

من الأسهل والأكثر فعالية من حيث التكلفة التغلب على الإصابة عن طريق التحكم في المرض في مراحله الاولى باجراء التدابير الوقائية التالية:

1 – يجب إزالة المخلفات النباتية قبل الزراعة ، وخاصة النباتات المصابة بدفنها.

2 – الحرث العميق للتربة بعد المحصول السابق للمساعدة في الحد من هذا المرض ويمكن ان تسزعد في طمر سكليروتينا ويفضل طمرها حتى 25 سم او أكثر حيث ان السكليروتينا التي تطمر عميقاً لاتنبت ويتم القضاء عليها عن طريق كائنات التربة وهذه الطريقة فعالة في العامل الممرض S. minor أكثر من الفطر .Sclerotinia sclerotiorum.

على الرغم من ان ابواغ الفطر تبقى في الطبقة الزراعية عدة سنوات فقط الابواغ الموجودة بالقرب من سطح التربة يمكنها الانبات واحداث الاصابة لذلك طمر المخلفات النباتية تمنع حدوث الاصابة من موسم لاخر وان عملية الفلاحة يمكن ان تعيد الابواغ لسطح التربة والانبات لذلك بزراعة نبات غير مضيف كالذرة والحبوب يخفض اعدادها للموسم الاخر.

3 – عدم تكرار زراعة نفس المحصول في نفس الارض الابعد 5-3 سنوات مع عدم زراعة النباتات المضيفة ويمكن زراعة الحبوب والذرة في الدورة الزراعية لعدم حساسيتها للمرض.

لان تكرار زراعة نفس المحصول يؤدي الى تفشي المرض بعد عام وتصبح التربة ملوثة بشدة.

حتى مع غياب المضيف يمكن لابواغ العفن الابيض البقاء في التزبة لمدة خمس سنوات في طبقة الزراعة ويمكنها الانبات.لكن بدون عدوى لاحقة.

اما اذا كان عددها منخفض في التربة فان دورة زراعية من 5-3 سنوات بدون مضيف تعتبر كافية.

4 – تطهير التربة ( كما ذكر في مقال سابق) حيث يمكن تنفيذ التطهير الشمسي للتربة (التشميس أو البسترة) في المناطق المشمسة و ذلك بتغطية التربة المحضرة والمبللة بغطاء من البولي إيثيلين بسماكة 50-35 ميكرونًا والحفاظ عليه في مكانه لمدة شهر واحد على الأقل خلال فترة مشمسة من السنة و هذا يساعد في ادقضاء على العفن الأبيض في الطبقة السطحية من التربة.

5 – التخلص من الأعشاب ويوجد مجموعة واسعة من الأعشاب المضيفة بالتالي وجودها بالحقل يوفر لقاحاً لمحص ل مضيف وعدم التخلص من الاعشاب يقلل من فائدة تناوب المحاصيل.

من الاعشاب المضيفة الخردل والبيقية ومحفظة الراعي والباذنجان البري.

6 – تأمين مساحة كافية للنباتات وتجنب زيادة الكثافة النباتية وزيادة تباعد الصفوف بين النباتات من أجل السماح للضوء بالنفاذ ولتشجيع الجفاف السريع للأوراق والثمار في الأيام الرطبة.

7 – الزراعة في مصاطب في ظروف الامطار المستمرة والمتتالية.

8 – تجنب التسميد النتروجيني الغزير وان لا يتجاوز الحد المطلوب تجنباً لزيادة حجم المجموع الخضري. .

9 – الصرف الجيد للتربة إن وجود الماء الراكد سيعزز انتشار العفن الأبيض.

10 – تحسين حركة الهواء بين النباتات لجعل المناخ المحلي للنباتات أقل ملائمة للعدوى من اجل تقليل الرطوبة وسرعة جفاف أوراق النبات.

11 – الري بالتنقيط هو أفضل طرق للري ويفضل الري الصباحي وفي حال كان الري بالحقل بالرزاذ يجب تقليل عدد مرات الري والتباعد بين الريات باجراء الري صباحا كل 24 ساعة في الصباح الباكر وايقاف الري قبل الظهيرة .

12 – تتضمن تقنيات تقليل الرطوبة الأخرى (أثناء النمو) تغطية الأرض بشرائح من البولي إيثيلين للحد من التبخر من التربة والمساعدة في عزل النباتات عن التربة.

13 – مراقبة الحقل بانتظام اسبوعياً للتعرف على وجود العفن الأبيض.

المكافحة العضوية:

Contans عبارة عن تركيبة تجارية من الفطريات المسببة للأمراض S. sclerotiorum sclerotia، وقد تقلل من حدوث العفن الأبيض و/أو شدته إذا تم تطبيقه على التربة على مدى سنوات عديدة.

تجنب الإفراط في الري والتسميد الذي يؤدي إلى مظلات كثيفة ومورقة مناسبة للعفن الأبيض. قم بتعزيز حركة الهواء داخل المظلة عن طريق زراعة أصناف ذات بنية أصغر حجمًا ومستقيمة، وزراعة صفوف موازية لاتجاه الرياح السائدة، وزراعتها على مسافات أوسع بين الصفوف. ستعمل هذه الممارسات على تقليل مدة رطوبة الأوراق والتربة وقد تساعد في تقليل العفن الأبيض في مناطق الإنتاج شبه القاحلة. إذا كان ذلك ممكنًا، استخدم الري بالتنقيط أو جدول الري لمنع استمرار رطوبة الأوراق والتربة. دمج حطام المحاصيل بعمق لدفن التصلب.

#المكافحة الكيميائية:

ويجب أن ترافق التدابير الزراعية السابقة العلاج الكيمائي عندما يتوقع وجود شروط العفن الأبيض (مثل الرطوبة) اللجوء الى تطبيق مبيدات الفطريات ويختلف عدد التطبيقات المطلوبة وفقًا لنوع المحصول وبيئة النمو.

ويجب ان لا تستخدم منتجات تحتوي على نفس العنصر النشط في العلاجات المتتالية. في حالة اختيار استخدام مبيدات الفطريات لذلك يجب التأكد من أنها تنتمي إلى مجموعات مختلفة لمنع العامل الممرض من تطوير مقاومة لمواد كيميائية معينة.

فيما يلي مبيدات الفطريات المستخدمة في واحد أو أكثر من مناطق العالم ويجب عند تطبيق المبيد تغطية كاملة للنبات وبشكل مبكر من عمر النبات وقبل وصول النبات لمرحلة تغطية التربة بشكل كامل:

Rizolex-T and Topsin-M at 200 ppm

Ridomil MZ 72 WP (metalaxyl 8%+mancozeb 64%)

Ridomil gold,

Benlate,

Tecto-60

Topsin-M.

Pyrimethanil،

Cyprodinil + fludioxonil،

Benomyl،

Thiram،

Iprodione،

Procymidone،

Vinclozolin،

Carbendazim

المكافحة الحيوية:

استخدم بنجاح في المكافحة الحيوية كل مما يلي:

Coniothyrium minitans;

Sporidesmium sclerotivorum.

Trichoderma hamatum.

المراجع:

Bennett, J. Michael; Rhetoric, Emeritus; Hicks, Dale R.; Naeve, Seth L.; Bennett, Nancy Bush (2014). The Minnesota Soybean Field Book (PDF). St Paul, MN: University of Minnesota Extension. p. 81. Retrieved 21 February 2016.

Agrios, George N. Plant Pathology. 5th ed.. Burlington, MA: Elsevier Academic Press, 2005. 546-550. Print.Pohronezny, K. L. “White Mold.” Compendium of Tomato Diseases. 1st ed. St. Paul, MN: The American Phytopathological Society, 1991. Print.Pernezny, K, M. T Momol, and C. A Lopes. “White Mold.” Compendium of Pepper Diseases. 1st ed. St. Paul, MN: The American Phytopathological Society, 2003.

Abawi, G.S., and R.G. Grogan. 1979. Epidemiology of diseases caused by Sclerotinia spp. Phytopathology 69:899-904.

Adams, P. B., and W.A. Ayers. 1979. Ecology of Sclerotinia spp. Phytopathology 69:896-899.

Atallah, Z.K., B. Larget, X. Chen, and D.A. Johnson. 2004. High genetic diversity, phenotypic uniformity, and evidence of outcrossing in Sclerotinia sclerotiorum in the Columbia Basin of Washington state. Phytopathology 94:737-742.

Bradley, C.A., R. A. Henson, P.M. Porter, D.G. LeGare, L.E. del Rio, and S.D. Khot. 2006. Response of canola cultivars to Sclerotinia sclerotiorum In controlled and field environments. Plant Disease 90:215-219.

Butzler, T.M., J. Bailey, and M.K. Beute. 1998. Integrated management of Sclerotinia blight in peanut: Utilizing canopy morphology, mechanical pruning, and fungicide timing. Plant Disease 82:1312-1318.

Clarkson, J.P., K. Phelps, J.M. Whipps, C.S. Young, J.A. Smith, and M. Watling. 2007. Forecasting Sclerotinia disease on lettuce: a predictive model for carpogenic germination of Sclerotinia sclerotiorum sclerotia. Phytopathology 97:621-631.

Gerlagh, M., H.M. Goossen-van de Geijn, N.J. Fokkema, and P.F.G. Vereijken. 1999. Long-term biosanitation by application of ConIothyrium minitans on Sclerotinia sclerotiorum-infected crops. Phytopathology 89:141-147.

Hao, J.J., K.V. Subbarao, and J.M. Duniway. 2003. Germination of Sclerotinia minor and S. sclerotiorum sclerotia under various soil moisture and temperature combinations. Phytopathology 93:443-450.

Hao, J.J., K.V. Subbarao, and S.T. Koike. 2003. Effects of broccoli rotation on lettuce drop caused by Sclerotinia minor and on the population density of sclerotia in soil. Plant Disease 87: 159-156.

Hollowell, J.E., B.B. Shew, M.A. Cubeta, and J.W. Wilcut. 2003. Weed species as hosts of Sclerotinia minor In peanut fields. Plant Disease 87:197-199.

Kolkman, J.M. and J.D. Kelly. 2002. Agronomic traits affecting resistance to white mold in common bean. Crop Science 42:693-699.

Livingstone, D.M., J.L. Hampton, P.M. Phipps, and E.A. Grabau. 2005. Enhancing resistance to Sclerotinia minor in peanut by expressing a barley oxalate oxidase gene. Plant Physiology 137:1354–1362.

Mueller, D.S., A.E. Dorrance, R.C. Derksen, E. Ozkan, J.E. Kurle, C.R. Grau, J.M. Gaska, G.L. Hartman, C.A. Bradley, and W.L. Pedersen. 2002. Efficacy of fungicides on Sclerotinia sclerotiorum and their potential for control of Sclerotinia stem rot on soybean. Plant DIsease 86:26-31.

Otto-Hanson, L., J.R. Steadman, R. Higgins, and K.M. Eskridge. 2011. Variation In Sclerotinia sclerotiorum bean isolates from multisite resistance screening locations. Plant Disease 95:1370-1377.

Njambere, E.N., W. Chen, C. Frate, B-M. Wu, S.R. Temple, and F.J. Muehlbauer. 2008. Stem and crown rot of chickpea In California caused by Sclerotinia trifoliorum. Plant disease 92:917-922

Nelson, B., and A. Lamey. 2000. Sclerotinia diseases of sunflower. North Dakota State Extension Service Bulletin PP-840.

Pethybridge, S.J., F.S. Hay, and D.H. Gent. 2010. Characterization of the spatiotemporal attributes of Sclerotinia flower blight epidemics In a perennial pyrethrum pathosystem. Plant Disease 94:1305-1313

Subbarao, K.V., S.T. Koike, and J.C. Hubbard. 1996. Effects of deep plowing on the distribution and density of Sclerotinia minor sclerotia and lettuce drop incidence. Plant Disease 80:28-33.

Workneh, P. and X.B. Yang. 2000. Prevalence of Sclerotinia stem rot of soybeans in the north-central United States In relation to tillage, climate, and latitudinal positions. Plant Disease 90:1375-1382.

Wu, B.M. and K.V. Subbarao. 2006. Analyses of lettuce drop Incidence and population structure of Sclerotinia sالمراجع المختارة

.Sclerotinia spp عباوي جي إس و آر جي جروجان 1979 وبائيات الأمراض التي تسببها علم أمراض النبات 69 899-904

النيابة. علم أمراض النبات 69 9 Sclerotinia آیرز. 1979 . علم البيئة من WA و PB آدامز 899-896.

عطا الله زد كيه، ب. لارجت إكس. تشين، ودي إيه جونسون 2004 التنوع الجيني العالي في حوض كولومبيا Sclerotinia sclerotiorum والتوحيد المظهري، والأدلة على التهجين في بولاية واشنطن. علم أمراض النبات 94 737-742

برادلي، كاليفورنيا، أر إيه هنسون، بي إم بورتر، دي جي ليجار، لو ديل ريو، وإس دي خوت. في البيئات المراقبة erotinia sclerotiorum 2006 استجابة أصناف الكانولا لمرض . والحقلية. أمراض النبات 90: 215-219

بوتزلر، تي إم جيه بيلي، ومك بيوتي 1998. الإدارة المتكاملة لفحة السكليروتينيا في الفول السوداني: الاستفادة من مورفولوجيا المظلة، والتقليم الميكانيكي، وتوقيت مبيدات الفطريات. أمراض النبات 82 1312-1318

کلاركسون جي بي ك. فيلبس جي إم ويبس، سي إس يونغ جي إيه سميث، وإم واتلينج. على الخس: نموذج تنبؤي لإنبات الكاربوجينيا لمرض Sclerotinia 2007 التنبؤ بمرض Sclerotinia sclerotiorum sclerotia 631-621 97 علم أمراض النبات

Gerlagh, M., HM Goossen-van de Geijn, NJ Fokkema, and PFG Vereijken. الإصحاح الحيوي على المدى الطويل عن طريق تطبيق مينيتان كونيوثيريوم على 1999.

علم أمراض النبات :141189-147 . Sclerotinia sclerotiorum المحاصيل المصابة بـ

.S و Sclerotinia minor هاو جي جي كيه في سوباراو، وجي إم دونيواي. 2003 إنبات تحت ترکيبات مختلفة من رطوبة ودرجة حرارة التربة . علم أمراض sclerotiorum sclerotia النبات 93 443-450

هاو، جي جي، كيه في سوباراو، وإس تي كويكي 2003. تأثير دوران البروكلي على تساقط وعلى الكثافة السكانية لمرض Sclerotinia minor نبات الخس المتسبب عن مرض